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Maryam Khaksari – Determination and Quantification of Water-Soluble and Fat-Soluble Vitamins in Human Biofluids with HPLC/MS
2014 Annual Research Forum for Graduate and Undergraduate Students for the Department of Chemical Engineering
The lab I've been volunteering at. Behind me is an HPLC machine I helped fix and have been learning to use.
De mengkraan van een micro HPLC (high performance liquid chromatography).
Een mooi onderdeel met een prettige dieptewerking door de leidingen in de voorgrond.
De kleur van de leidingen wat verduidelijkt met lightroom.
Accelerated solvent extraction (ASE)
ASE system is suitable for quick extraction of small amount of solid samples (e. g. soil, ash etc.). The automated instrumentation use solvents like organic and/or aqueous solvents (acids or bases) at elevated temperatures and pressures for the extraction of different chemical compounds from the solid matrix. The extracted compounds are organic contaminants (e. g. oil, pesticides etc.).
After ASE preparation samples can be examined with different high resolution analytical techniques (GC-MS, HPLC-MS, ICP-MS).
Leratiomyces ceres (Agaricales, Strophariaceae) Bogotá, Colombia
Primer registro de esta especie para el país, determinado el 5/06/2016 por Chivatá Teodoro y Arias Camila, en el Humedal La Conejera Bogotá, Colombia.
2014-2019, Registros
colombia.inaturalist.org/observations?place_id=any&su...
2016, Publicación
www.researchgate.net/publication/315723972_Hongos_en_Hume...
2020, Recopilación
mushroomobserver.org/414059?q=1JArw
A continuación, se realiza su respectiva descripción: basidioma estipitado, lignicola, principalmente gregario, en ocasiones solitario o cespitado, no higrofano, píleo de 5 a 7 cm de diámetro, hemisférico en un principio, luego pasa a ser plano convexo con el centro umbonado, orbicular (vista apical). Margen recto, entero y ligeramente ondulado, de superficie glabra, viscida y brillosa, que luego pasa a ser seca y opaca, de color rojo que tiende a oscurecerse con el tiempo, con escamas blancas y fasciculadas en el margen, originadas por restos del velo universal. Himenio con lamelas y lamélulas, se encuentran próximas entre sí (apretadas), adnadas a ligeramente uncinadas, anchas, de borde liso, lamélulas atenuadas, de color café claro principio, después gris violáceo y finalmente púrpura negruzco, arista entera, blanquecina. Contexto homegeneo y hueco. Esporada de color marron oscuro.
Estípite de 4-8 cm de largo x 0.4-0.5 cm de ancho, cilíndrico, central, sub-bulboso y con tomento basal con cordones miceliares (rizomorfos), de color blanco con zonas de color naranja rojizo que se intensifica con el tiempo, de superficie pruinosa. Se engrosa ligeramente hacia la base. En algunos ejemplares se logra observar un anillo en banda (rudimentario) adherido al estípite, delgado y efimero. De consistencia fibrosa. Sin olor o sabor apreciable. Basidiosporas elipsoidales, lisas, de paredes gruesas, con poro germinal.
El trabajo de microscopia se realizó con un Microscopio Zeiss de Luz Halogena 6v 30w y reactivos rojo congo, melzer e hidróxido de potasio (KOH) 5%. Se observan basidios tetraspóricos, claviformes de 31 x 8 µm, basidiosporas elipsoidales no amiloides, de color marrón a rojo oscuro, superficie lisa, ligeramente apiculadas, con poro germinativo evidente (0,8 a 1 µm). Cistidios fusiformes, de 35,7 x 12,7 µm en general se observan hifas paralelas y presencia de fíbulas.
Sinonimia:
Agaricus squamosus f. aurantiacus Cooke, Handbook of British Fungi: 199 (1887)
Agaricus ceres Cooke & Massee, Grevillea 16 (79): 72 (1888)
Flammula puiggarii Speg., Boletín de la Academia Nacional de Ciencias en Córdoba 11 (4): 418 (1889)
Hypholoma aurantiaca (Cooke) J. Faus
Hypholoma aurantiacum (Cooke) Faus, Boletín de la Sociedad Micologica Castellana 7: 70 (1982)
Hypholoma puiggarii Raithelh, 1985
Naematoloma aurantiaca (Cooke) Guzmán
Nematoloma aurantiacum (Cooke) Guzmán (1975)
Naematoloma aurantiacum (Cooke) Guzmán, Beihefte zur Nova Hedwigia 51: 114 (1975)
Nematoloma aurantiacum (Cooke) Guzmán ex Singer (1986)
Naematoloma puiggarii Singer, 1969
Psilocybe aurantiaca (Cooke) Noordel., Persoonia 16 (1): 128 (1995)
Psilocybe ceres (Cooke & Massee) Sacc., Sylloge Fungorum 9: 140 (1891)
Psilocybe squamosa var. aurantiaca (Cooke) Papetti: 23 (2011)
Stropharia aurantiaca (Cooke) M. Imai, Journal of the Faculty of Agriculture of the Hokkaido Imperial University 43: 267 (1938)
Stropharia percevalii var. aurantiaca (Cooke) Sacc., Sylloge Fungorum 5: 1016 (1887)
Stropharia squamosa var. aurantiaca (Cooke) Massee, British Fungus-Flora 1: 402 (1892)
Stropholoma aurantiacum (Cooke) Balletto, Micologia Italiana 18 (1): 36 (1989)
Stropholoma aurantiacum (Cooke) Ryman, Funga Nordica: 913 (2008)
Stropholoma aurantiaca (Cooke) Ryman (2008)
Stropharia thrausta; Moreno & Albertó (1996)
Posición taxonómica, Hongos, Basidiomycota, Agaricomycotina, Agaricomicetos, Agaricomycetidae, Agaricales, Strophariaceae, Leratiomyces (Mycobank, 2018; Indexfungorum.org, 2018). Según Noordeloos M.E., (2011), esta especie cuenta con aproximadamnete 21 sinonimias. Nombre actual 2018, Leratiomyces ceres (Cooke & Massee) Spooner & Bridge, Mycotaxon 103: 116 (2008)
Segun Vasco-Palacios AM, Franco-Molano AE. 2013, la familia Strophariaceae esta representada por las siguientes especies:
Hypholoma sublateritium (Schaeff.) Quél.
Hypholoma subviride (Berk. & M.A. Curtis) Dennis.
Melanotus alpiniae (Berk.) Pilát.
Melanotus cassiaecolor (Berk.) Singer.
Melanotus dumontii Singer
Naematoloma subviride (Berk. & M.A. Curtis) A.H.
Naematoloma udum (Pers.) P. Karst..
Pholiota aberrans A.H.
Pholiota apiahyna Speg.
Pholiota naucorioides Singer.
Pholiota privigna (Speg.) Singer.
Pleuroflammula squarrulosa Singer.
Psilocybe angustipleurocystidiata Guzmán.
Psilocybe antioquiensis Guzmán, Saldarr., Pineda, G. García & L.-F. Velázquez.
Psilocybe argentina (Speg.) Singer.
Psilocybe bispora Guzmán, Franco-Mol. & Ram.-Guill..
Psilocybe bullacea (Bull.) P. Kumm.
Psilocybe cabiensis Guzmán, M. Torres & Ram.-Guill.
Psilocybe caerulescens Murrill.
Psilocybe caerulescens var. ombrophila R. Heim
Psilocybe castanella var. subhyperella (Singer) Guzmán.
Psilocybe clavata Guzmán.
Psilocybe columbiana Guzmán.
Psilocybe coprophila (Bull.) P. Kumm.
Psilocybe cubensis (Earle) Singer.
Psilocybe fimicola Guzmán.
Psilocybe guatapensis Guzmán, Saldarr., Pineda, G. García & L.-F. Velázquez.
Psilocybe heliconiae Guzmán, Saldarr., Pineda, G. García & L.-F. Velázquez.
Psilocybe hoogshagenii var. hoogshagenii R. Heim.
Psilocybe montana (Pers.) P. Kumm.
Psilocybe peruviana Singer.
Psilocybe phyllogena (Peck) Peck.
Psilocybe pintonii Guzmán.
Psilocybe pleurocystidiosa Guzmán
Psilocybe plutonia (Berk. & M.A. Curtis) Sacc.
Psilocybe semiangustipleurocystidiata Guzmán, Ram.-Guill. & M. Torres
Psilocybe subacutipilea Guzmán, Saldarr., Pineda, G. García & L.-F. Velázquez
Psilocybe subcubensis Guzmán
Psilocybe subheliconiae Guzmán, Ram.-Guill. & M. Torres.
Psilocybe subhoogshagenii Guzmán, M. Torres & Ram.-Guill.
Psilocybe wrightii Guzmán.
Psilocybe yungensis Singer & A.H. Sm.
Psilocybe zapotecorum R. Heim.
Stropharia semiglobata (Batsch) Quél.
Otras consideraciones de la especie: respecto al valor nutricional no se reconoce alguna propiedad, sin olor o sabor destacable. Su comestibilidad no está especificada o se le reporta como "desconocido" (Courtecuisse, Duhem, 2007; Arora, 1986; Desjardin, Wood, Stevens, 2014; Trudell &Ammirati, 2009; Gerhardt y Grzyby, 2006). Por otra parte, los análisis de Anastos et al. (2008) sugieren que L. ceres contiene psilocibina en cantidades relativamente grandes (9,700-9,900 mg/kg peso seco).
Tomando como referencia los registros de los autores y los consolidados en la plataforma iNaturalista y gbif.org, la especie ha sido observada en Cota Cundinamarca, Engativá Bogotá D.C., Humedales del noroccidente de Bogotá (Humedal La Conejera, Humedal Cordoba, Humedal Tibabuyes, Humedal Torca-guaymaral), Humedal Santa Maria del Lago, Jardín Botánico José Celestino Mutis Bogotá D.C., Parque El Virrey Bogotá D.C., Parque La Florida Cundinamarca,Villamaría Caldas.
Agradecemos a la Facultad de Ciencias y Educación de la Universidad Distrital Francisco José de Caldas, Alcaldía Local de Suba, Humedales Bogotá, Beatriz Guataquí, Hugo Daniel Plazas e Interpretes ambientales del Jardín Botánico de Bogotá José Celestino Mutis y Aguas Bogotá.
Anastos N., Lewis S.W., Barnett N.W., Sims D.N., 2006. The determination of psilocin and psilocybin in hallucinogenic mushrooms by HPLC utilizing a dual reagent acidic potassium permanganate and Tris (2,20-bipyridyl)ruthenium(II) chemiluminescence detection system. J Forensic Sci. 51:45–51. doi.org/10.1111/j.1556-4029.2005.00033.x
Bridge P., Spooner B., Beever R., Park D., 2008. Taxonomy of the fungus commonly known as Stropharia aurantiaca, with new combinations in Leratiomyces. Mycotaxon.;103:109–121.
Coimbra VRM 2015 – Checklist of Central and South American Agaricales (Basidiomycota) II: Strophariaceae. Mycosphere 6(4), 441–458, www.mycosphere.org/pdf/Mycosphere_6_4_6.pdf
Guzmán G., 1980. Three new sections in the genus Naematoloma and a description of a new tropical species
Noordeloos M. E., 1999. Strophariaceae. In Bas, C. et al., eds. Flora Agaricina Neerlandica Volume 4. Rotterdam: A. A. Balkema; pp 27-107.
Pegler D. y Legon N.,1998. Stropharía aurantiaca. Perfiles de Hongos 97. Micólogo 12: 180.
Stamets P., 2003. Psilocybin Mushrooms of the World: An Identification Guide. Berkeley, CA: Ten Speed Press.
Vasco-Palacios AM, Franco-Molano AE. 2013. Diversity of Colombian macrofungi (Ascomycota-Basiciomycota). Mycotaxon, 121: p. 48. www.mycotaxon.com/resources/checklists/VascoPalacios-v121...
Leratiomyces ceres (Agaricales, Strophariaceae) Bogotá, Colombia
Primer registro de esta especie para el país, determinado el 5/06/2016 por Chivatá Teodoro y Arias Camila, en el Humedal La Conejera Bogotá, Colombia.
2014-2019, Registros
colombia.inaturalist.org/observations?place_id=any&su...
2016, Publicación
www.researchgate.net/publication/315723972_Hongos_en_Hume...
2020, Recopilación
mushroomobserver.org/414059?q=1JArw
A continuación, se realiza su respectiva descripción: basidioma estipitado, lignicola, principalmente gregario, en ocasiones solitario o cespitado, no higrofano, píleo de 5 a 7 cm de diámetro, hemisférico en un principio, luego pasa a ser plano convexo con el centro umbonado, orbicular (vista apical). Margen recto, entero y ligeramente ondulado, de superficie glabra, viscida y brillosa, que luego pasa a ser seca y opaca, de color rojo que tiende a oscurecerse con el tiempo, con escamas blancas y fasciculadas en el margen, originadas por restos del velo universal. Himenio con lamelas y lamélulas, se encuentran próximas entre sí (apretadas), adnadas a ligeramente uncinadas, anchas, de borde liso, lamélulas atenuadas, de color café claro principio, después gris violáceo y finalmente púrpura negruzco, arista entera, blanquecina. Contexto homegeneo y hueco. Esporada de color marron oscuro.
Estípite de 4-8 cm de largo x 0.4-0.5 cm de ancho, cilíndrico, central, sub-bulboso y con tomento basal con cordones miceliares (rizomorfos), de color blanco con zonas de color naranja rojizo que se intensifica con el tiempo, de superficie pruinosa. Se engrosa ligeramente hacia la base. En algunos ejemplares se logra observar un anillo en banda (rudimentario) adherido al estípite, delgado y efimero. De consistencia fibrosa. Sin olor o sabor apreciable. Basidiosporas elipsoidales, lisas, de paredes gruesas, con poro germinal.
El trabajo de microscopia se realizó con un Microscopio Zeiss de Luz Halogena 6v 30w y reactivos rojo congo, melzer e hidróxido de potasio (KOH) 5%. Se observan basidios tetraspóricos, claviformes de 31 x 8 µm, basidiosporas elipsoidales no amiloides, de color marrón a rojo oscuro, superficie lisa, ligeramente apiculadas, con poro germinativo evidente (0,8 a 1 µm). Cistidios fusiformes, de 35,7 x 12,7 µm en general se observan hifas paralelas y presencia de fíbulas.
Sinonimia:
Agaricus squamosus f. aurantiacus Cooke, Handbook of British Fungi: 199 (1887)
Agaricus ceres Cooke & Massee, Grevillea 16 (79): 72 (1888)
Flammula puiggarii Speg., Boletín de la Academia Nacional de Ciencias en Córdoba 11 (4): 418 (1889)
Hypholoma aurantiaca (Cooke) J. Faus
Hypholoma aurantiacum (Cooke) Faus, Boletín de la Sociedad Micologica Castellana 7: 70 (1982)
Hypholoma puiggarii Raithelh, 1985
Naematoloma aurantiaca (Cooke) Guzmán
Nematoloma aurantiacum (Cooke) Guzmán (1975)
Naematoloma aurantiacum (Cooke) Guzmán, Beihefte zur Nova Hedwigia 51: 114 (1975)
Nematoloma aurantiacum (Cooke) Guzmán ex Singer (1986)
Naematoloma puiggarii Singer, 1969
Psilocybe aurantiaca (Cooke) Noordel., Persoonia 16 (1): 128 (1995)
Psilocybe ceres (Cooke & Massee) Sacc., Sylloge Fungorum 9: 140 (1891)
Psilocybe squamosa var. aurantiaca (Cooke) Papetti: 23 (2011)
Stropharia aurantiaca (Cooke) M. Imai, Journal of the Faculty of Agriculture of the Hokkaido Imperial University 43: 267 (1938)
Stropharia percevalii var. aurantiaca (Cooke) Sacc., Sylloge Fungorum 5: 1016 (1887)
Stropharia squamosa var. aurantiaca (Cooke) Massee, British Fungus-Flora 1: 402 (1892)
Stropholoma aurantiacum (Cooke) Balletto, Micologia Italiana 18 (1): 36 (1989)
Stropholoma aurantiacum (Cooke) Ryman, Funga Nordica: 913 (2008)
Stropholoma aurantiaca (Cooke) Ryman (2008)
Stropharia thrausta; Moreno & Albertó (1996)
Posición taxonómica, Hongos, Basidiomycota, Agaricomycotina, Agaricomicetos, Agaricomycetidae, Agaricales, Strophariaceae, Leratiomyces (Mycobank, 2018; Indexfungorum.org, 2018). Según Noordeloos M.E., (2011), esta especie cuenta con aproximadamnete 21 sinonimias. Nombre actual 2018, Leratiomyces ceres (Cooke & Massee) Spooner & Bridge, Mycotaxon 103: 116 (2008)
Segun Vasco-Palacios AM, Franco-Molano AE. 2013, la familia Strophariaceae esta representada por las siguientes especies:
Hypholoma sublateritium (Schaeff.) Quél.
Hypholoma subviride (Berk. & M.A. Curtis) Dennis.
Melanotus alpiniae (Berk.) Pilát.
Melanotus cassiaecolor (Berk.) Singer.
Melanotus dumontii Singer
Naematoloma subviride (Berk. & M.A. Curtis) A.H.
Naematoloma udum (Pers.) P. Karst..
Pholiota aberrans A.H.
Pholiota apiahyna Speg.
Pholiota naucorioides Singer.
Pholiota privigna (Speg.) Singer.
Pleuroflammula squarrulosa Singer.
Psilocybe angustipleurocystidiata Guzmán.
Psilocybe antioquiensis Guzmán, Saldarr., Pineda, G. García & L.-F. Velázquez.
Psilocybe argentina (Speg.) Singer.
Psilocybe bispora Guzmán, Franco-Mol. & Ram.-Guill..
Psilocybe bullacea (Bull.) P. Kumm.
Psilocybe cabiensis Guzmán, M. Torres & Ram.-Guill.
Psilocybe caerulescens Murrill.
Psilocybe caerulescens var. ombrophila R. Heim
Psilocybe castanella var. subhyperella (Singer) Guzmán.
Psilocybe clavata Guzmán.
Psilocybe columbiana Guzmán.
Psilocybe coprophila (Bull.) P. Kumm.
Psilocybe cubensis (Earle) Singer.
Psilocybe fimicola Guzmán.
Psilocybe guatapensis Guzmán, Saldarr., Pineda, G. García & L.-F. Velázquez.
Psilocybe heliconiae Guzmán, Saldarr., Pineda, G. García & L.-F. Velázquez.
Psilocybe hoogshagenii var. hoogshagenii R. Heim.
Psilocybe montana (Pers.) P. Kumm.
Psilocybe peruviana Singer.
Psilocybe phyllogena (Peck) Peck.
Psilocybe pintonii Guzmán.
Psilocybe pleurocystidiosa Guzmán
Psilocybe plutonia (Berk. & M.A. Curtis) Sacc.
Psilocybe semiangustipleurocystidiata Guzmán, Ram.-Guill. & M. Torres
Psilocybe subacutipilea Guzmán, Saldarr., Pineda, G. García & L.-F. Velázquez
Psilocybe subcubensis Guzmán
Psilocybe subheliconiae Guzmán, Ram.-Guill. & M. Torres.
Psilocybe subhoogshagenii Guzmán, M. Torres & Ram.-Guill.
Psilocybe wrightii Guzmán.
Psilocybe yungensis Singer & A.H. Sm.
Psilocybe zapotecorum R. Heim.
Stropharia semiglobata (Batsch) Quél.
Otras consideraciones de la especie: respecto al valor nutricional no se reconoce alguna propiedad, sin olor o sabor destacable. Su comestibilidad no está especificada o se le reporta como "desconocido" (Courtecuisse, Duhem, 2007; Arora, 1986; Desjardin, Wood, Stevens, 2014; Trudell &Ammirati, 2009; Gerhardt y Grzyby, 2006). Por otra parte, los análisis de Anastos et al. (2008) sugieren que L. ceres contiene psilocibina en cantidades relativamente grandes (9,700-9,900 mg/kg peso seco).
Tomando como referencia los registros de los autores y los consolidados en la plataforma iNaturalista y gbif.org, la especie ha sido observada en Cota Cundinamarca, Engativá Bogotá D.C., Humedales del noroccidente de Bogotá (Humedal La Conejera, Humedal Cordoba, Humedal Tibabuyes, Humedal Torca-guaymaral), Humedal Santa Maria del Lago, Jardín Botánico José Celestino Mutis Bogotá D.C., Parque El Virrey Bogotá D.C., Parque La Florida Cundinamarca,Villamaría Caldas.
Agradecemos a la Facultad de Ciencias y Educación de la Universidad Distrital Francisco José de Caldas, Alcaldía Local de Suba, Humedales Bogotá, Beatriz Guataquí, Hugo Daniel Plazas e Interpretes ambientales del Jardín Botánico de Bogotá José Celestino Mutis y Aguas Bogotá.
Anastos N., Lewis S.W., Barnett N.W., Sims D.N., 2006. The determination of psilocin and psilocybin in hallucinogenic mushrooms by HPLC utilizing a dual reagent acidic potassium permanganate and Tris (2,20-bipyridyl)ruthenium(II) chemiluminescence detection system. J Forensic Sci. 51:45–51. doi.org/10.1111/j.1556-4029.2005.00033.x
Bridge P., Spooner B., Beever R., Park D., 2008. Taxonomy of the fungus commonly known as Stropharia aurantiaca, with new combinations in Leratiomyces. Mycotaxon.;103:109–121.
Coimbra VRM 2015 – Checklist of Central and South American Agaricales (Basidiomycota) II: Strophariaceae. Mycosphere 6(4), 441–458, www.mycosphere.org/pdf/Mycosphere_6_4_6.pdf
Guzmán G., 1980. Three new sections in the genus Naematoloma and a description of a new tropical species
Noordeloos M. E., 1999. Strophariaceae. In Bas, C. et al., eds. Flora Agaricina Neerlandica Volume 4. Rotterdam: A. A. Balkema; pp 27-107.
Pegler D. y Legon N.,1998. Stropharía aurantiaca. Perfiles de Hongos 97. Micólogo 12: 180.
Stamets P., 2003. Psilocybin Mushrooms of the World: An Identification Guide. Berkeley, CA: Ten Speed Press.
Vasco-Palacios AM, Franco-Molano AE. 2013. Diversity of Colombian macrofungi (Ascomycota-Basiciomycota). Mycotaxon, 121: p. 48. www.mycotaxon.com/resources/checklists/VascoPalacios-v121...
At Chirality 2009, a Supelco Representative discusses discusses a chiral chromatography application with a show attendee.
Aberto a toda a comunidade académica, decorreu a 7 de junho de 2013, no Auditório 3 do IPBeja, o seminário “A Solução Global para HPLC e UHPLC”
Mais reportagens fotográficas em: www.flickr.com/photos/40478366@N08/collections/
HPLC ANALYSIS OF AROMATIC COMPOUNDS, PART OF JBEI'S ENZYME OPTIMIZATION GROUP, DECONSTRUCTION DIVISION, AT LAWRENCE BERKELEY NATIONAL LABORATORY.
For more information or additional images:
(202) 586-5251
EnergyTechnologyVisualsCollectionETVC@hq.doe.gov
www.flickr.com/photos/departmentofenergy/collections/7215...
Peak resolution in chromatography. Where, tR2 και tR1 are the retention times of the retained components 1 και 2 measured from injection to peak maximum and w2 and w1 are peak widths in units of time measured at the base of the peaks 1 and 2.
Aberto a toda a comunidade académica, decorreu a 7 de junho de 2013, no Auditório 3 do IPBeja, o seminário “A Solução Global para HPLC e UHPLC”
Mais reportagens fotográficas em: www.flickr.com/photos/40478366@N08/collections/